1.培養(yǎng)細胞：取處于指數(shù)生長期、用較大瓶皿培養(yǎng)的、80%～90%匯合單層培養(yǎng)細胞。

　　2.加秋水仙素：使用最終濃度為0.02～0.8微克/毫升營養(yǎng)液，溫箱繼續(xù)培養(yǎng)6～10小時；或用低溫封閉法：把培養(yǎng)細胞置于4℃條件下6～12小時后，再于37℃溫箱繼續(xù)培養(yǎng)6～10小時處理（加秋水仙素）。

　　3.采集分裂細胞：可利用分裂中期細胞體變圓與底物附著不牢特點，此時手持培養(yǎng)瓶，左右反復(fù)橫向水平搖動，令培養(yǎng)液在培養(yǎng)細胞表面反復(fù)沖刷。應(yīng)用此法可使90%的中期分裂細胞從瓶壁脫落，注意勿用力過猛，以防多量非分裂細胞脫落影響觀察。

　　4.離心：收集培養(yǎng)液，1000轉(zhuǎn)/分鐘離心5～10分鐘。

　　5.低滲處理：吸除上清液、加入預(yù)溫至37℃的0.075MKCl溶液，在溫箱中靜置20～30分鐘。

　　6.預(yù)固定：向懸液中加新鮮1：3醋酸、甲醇固定液1ml，用吸管吹打調(diào)勻，此措施能起到先使細胞表面輕微固定，可防止固定后細胞粘連成塊。

　　7.固定：離心，同4，吸除上清液，加新鮮固定劑5～10ml；加固定劑時要用一手微斜持離心管，另手用吸管吸取固定劑，把固定劑逐滴滴在離心管壁上，使之慢慢流入離心管中，然后輕輕吹打均勻，置15～20分鐘。

　　8.重復(fù)：末次離心后，小心吸除大部分上清，據(jù)懸液中細胞密度大小，醫(yī)學(xué)教.育網(wǎng)搜集整理余下固定液0.5～1ml.

　　9.制片：用滴片法制片，按如下步驟：徹底洗凈載物片，勿留任何油脂，置冰箱中儲備備用。滴片前現(xiàn)從冰箱中取出冷載物片1片，在載物片表面出現(xiàn)細微水氣時，立即向片的一側(cè)滴2～3滴細胞懸液，滴片時的距離能保持半米高度才好。滴片后置室溫中令其自然干燥，或用吹風(fēng)機熱風(fēng)吹干亦可。如此制備好的標本可置盒中備用或立即進行染色觀察。

　　10.染色和封片：一般常用Giemsa染色：取干液Giemsa1份加pH6.8磷酸緩沖液9份混合，醫(yī)學(xué)教.育網(wǎng)搜集整理染色10分鐘后，水洗、晾干、可直接觀察。如標本需要保存或做長時間觀察，可過二甲苯兩次后，用中性樹膠封片后，再過二甲苯，然后封片亦可。