在顯微鏡下準確計數紅細胞，通常采用血細胞計數板（如Neubauer改良型計數板）進行。具體步驟如下：
1. 準備樣品：首先將血液稀釋到適當的濃度，一般情況下是用等滲的鹽水或者專門的稀釋液按一定比例稀釋，比如1:200的比例。
2. 加樣：使用微量移液器吸取少量稀釋后的血樣（通常為10微升），然后輕輕滴加至計數板的凹槽中。確保液體完全覆蓋計數區(qū)域但不要溢出。
3. 覆蓋蓋玻片：將專用的蓋玻片平穩(wěn)地放在計數板上，避免產生氣泡。
4. 顯微鏡觀察：選擇合適的放大倍率（通常為10x或20x），找到計數板上的特定區(qū)域進行觀察。Neubauer改良型計數板上有五個大方格區(qū)，每個大格又分為16個小方格。一般選取四個角的大方格和中間的一個大格共5個區(qū)域來計數紅細胞。
5. 計數：在選定的區(qū)域內逐個計數所有可見的紅細胞。遵循“左不右、上不算下”的原則，即只計算位于邊界線左側或上方的細胞；若細胞正好落在兩條線相交處，則僅計算左上線和右下線上的細胞。
6. 計算濃度：根據所使用的稀釋比例及計數板的具體規(guī)格，將實際觀察到的數量轉換成每微升血液中的紅細胞數目。例如，如果Neubauer改良型計數板上5個區(qū)域共觀察到了N個紅細胞，并且是按照1:200的比例稀釋，則原血樣中每微升的紅細胞數量為：(N/5) 200 10^4。
7. 數據記錄與分析：將計算結果記錄下來，必要時進行多次重復實驗以提高準確性，并對數據進行統計學處理。

需要注意的是，在整個過程中要嚴格遵守無菌操作規(guī)范，避免污染樣本。此外，顯微鏡的清潔維護也很重要，保證視野清晰干凈有助于獲得更準確的結果。